1. 病毒性心肌炎模型

建模方法

• 病原體選擇：柯薩奇B3m病毒（CVB3m, Nancy株）是常用病原體，通過腹腔注射0.2 ml病毒液（滴度≥1×10? PFU/ml）誘導重癥心肌炎。

• 動物選擇：SPF級BALB/c小鼠（4-6周齡，體重18-20 g），雌雄不限但需控制性別變量。

• 病程特點：

• 急性模型：感染后6小時體溫升高0.9℃，24小時出現心電圖異常（ST段抬高、P-R間期延長），2天內死亡率高達27.8%。

• 慢性模型：感染后持續觀察120天，心肌炎發病率49%，部分進展為擴張性心肌病。

評價體系

• 生存率與行為學：每小時記錄死亡時間，每6小時監測攝食量、活動狀態。

• 心電圖監測：感染后24小時心率加快、節律不齊，ST段動態變化反映心肌損傷程度。

• 病理學分析：

• 肉眼觀察心臟腫大、質地松軟，計算心/體重比（慢性模型顯著增加）。

• 光鏡可見心肌細胞溶解、炎性細胞浸潤；電鏡顯示線粒體腫脹、肌絲斷裂。

• 免疫標志物：血清IgM陽性率隨時間下降，IgG變化不顯著。

2. 心肌梗死（MI）模型

建模方法

• 手術核心：冠狀動脈左前降支（LAD）結扎法為主流技術，需顯微操作以提高成功率。

• 顯微技術：在10倍放大鏡下分離胸骨旁組織，精準定位LAD（個體差異需校準）。

• 結扎標志：左心耳下緣與肺動脈圓錐交界處，結扎后心肌變蒼白、搏動減弱。

• 替代技術：擠心臟法結合結扎可加速缺血，但需控制力度以避免心室破裂。

評價體系

• 功能評估：

• 超聲心動圖：檢測左室射血分數（LVEF）、室壁運動異常（模型組LVEF下降≥30%）。

• 心電圖：肢體導聯ST段弓背抬高≥0.1 mV為急性心梗標志。

• 病理學驗證：

• TTC染色：梗死區呈白色（壞死），正常心肌染為粉紅色，定量計算梗死面積。

• Masson染色：藍色膠原纖維沉積提示纖維化，FN和COL3A1基因表達上調。

• 分子機制：梗死區促炎基因（TNF-α、MCP-1）升高，氧化應激標志物（MDA、SOD）異常。

模型缺陷與優化

• 死亡率控制：顯微操作可將術后死亡率從40%降至15%，但需熟練技術團隊。

• 個體差異：約20%小鼠存在冠狀動脈分支變異，需術前行冠脈造影預篩選。

3. 酒精性心肌?。ˋCM）模型

建模方法

• 酒精干預：

• 液體飼料法：含5%-6%乙醇（體積比）的Lieber-DeCarli配方，持續喂養8-12周。

• 灌胃法：每日灌胃30%乙醇溶液（5 g/kg），模擬長期酗酒狀態。

• 協同因素：高脂飲食（豬油占比10%）可加速心肌脂肪沉積和纖維化。

評價體系

• 形態學：心臟重量增加，心室壁變薄，心腔擴張。

• 功能檢測：離體心臟灌流顯示收縮力下降，超聲提示LVEF降低。

• 分子標記：心肌組織ATP合成酶活性下降，PPAR-α通路抑制。

二、模型選擇與實驗設計要點

1. 模型適用性對比

2. 實驗設計建議

• 樣本量計算：根據預實驗死亡率調整，心肌炎模型需≥20只/組，心梗模型需≥15只/組。

• 時間節點：

• 急性心梗：術后24-48小時檢測心肌酶譜，7天評估纖維化。

• 慢性心肌炎：感染后40天、80天、120天分階段采樣。

• 倫理規范：使用異氟烷麻醉（濃度1.5%-2%），術后鎮痛采用布洛芬混懸液。

三、前沿技術與模型拓展

• 基因編輯模型：CRISPR/Cas9構建心肌特異性基因敲除小鼠（如Cx43雜合子），研究電傳導異常相關心肌病。

• 多模態成像：微型MRI聯合熒光標記技術實現活體心肌損傷動態監測。

• 類器官整合：心肌細胞與成纖維細胞共培養類器官，用于體外模擬藥物毒性。